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氨基酸組分分析

點(diǎn)擊次數(shù):2158 更新時(shí)間:2016-02-22

    如果目前分離蛋白質(zhì)組的技術(shù)是2-DE,那么隨之而來(lái)的挑戰(zhàn)是數(shù)百數(shù)千個(gè)蛋白如何被鑒定. 在這里,我們不考慮傳統(tǒng)的蛋白鑒定方法,如免疫印跡法、內(nèi)肽的化學(xué)測(cè)序、已知或未知蛋白的comigration分析,或者在一個(gè)有機(jī)體中有意義的基因的過(guò)表達(dá). 并不是因?yàn)檫@些方法無(wú)效,而是因?yàn)樗鼈兺ǔ:臅r(shí)、耗力,不適合高流通量的篩選. 目前,所選用的技術(shù)包括對(duì)于蛋白鑒定的圖象分析、微量測(cè)序;進(jìn)一步對(duì)肽片段進(jìn)行鑒定的氨基酸組分分析.ELISA試劑盒

(1) 圖象分析技術(shù)(Image analysis). 

    “滿(mǎn)天星”式的2-DE圖譜分析不能依靠本能的直覺(jué),每一個(gè)圖象上斑點(diǎn)的上調(diào)、下調(diào)及出現(xiàn)、消失,都可能在生理和病理狀態(tài)下產(chǎn)生,必須依靠計(jì)算機(jī)為基礎(chǔ)的數(shù)據(jù)處理,進(jìn)行定量分析. 在一系列高質(zhì)量的2-DE凝膠產(chǎn)生(低背景染色,高度的重復(fù)性)的前提下,圖象分析包括斑點(diǎn)檢測(cè)、背景消減、斑點(diǎn)配比和數(shù)據(jù)庫(kù)構(gòu)建. 首先,采集圖象通常所用的系統(tǒng)是電荷耦合CCD(charge coupled device)照相機(jī);激光密度儀(laser densitometers)和Phospho或Fluoroimagers,對(duì)圖象進(jìn)行數(shù)字化. 并成為以象素(pixels)為基礎(chǔ)的空間和網(wǎng)格. 其次,在圖象灰度水平上過(guò)濾和變形,進(jìn)行圖象加工,以進(jìn)行斑點(diǎn)檢測(cè). 利用Laplacian,Gaussian,DOG(difference of Gaussians) opreator使有意義的區(qū)域與背景分離,限定斑點(diǎn)的強(qiáng)度、面積、周長(zhǎng)和方向.

    圖象分析檢測(cè)的斑點(diǎn)須與肉眼觀測(cè)的斑點(diǎn)一致. 在這一原則下,多數(shù)系統(tǒng)以控制斑點(diǎn)的重心或zui高峰來(lái)分析,邊緣檢測(cè)的軟件可描述斑點(diǎn)外觀,并進(jìn)行邊緣檢測(cè)和鄰近分析,以增加度. 通過(guò)閾值分析、邊緣檢測(cè)、銷(xiāo)蝕和擴(kuò)大斑點(diǎn)檢測(cè)的基本工具還可恢復(fù)共遷移的斑點(diǎn)邊界. 以PC機(jī)為基礎(chǔ)的軟件Phoretix-2D正挑戰(zhàn)古老的Unix為基礎(chǔ)的2-D分析軟件包. 第三,一旦2-DE圖象上的斑點(diǎn)被檢測(cè),許多圖象需要分析比較、增加、消減或均值化. 由于在2-DE中出現(xiàn)100%的重復(fù)性是很困難的,由此凝膠間的蛋白質(zhì)的配比對(duì)于圖象分析系統(tǒng)是一個(gè)挑戰(zhàn). IPG技術(shù)的出現(xiàn)已使斑點(diǎn)配比變得容易.

    因此,較大程度的相似性可通過(guò)斑點(diǎn)配比向量算法在長(zhǎng)度和平行度觀測(cè). 用來(lái)配比的軟件系統(tǒng)包括Quest,Lips,Hermes,Gemini等,計(jì)算機(jī)方法如相似性、聚類(lèi)分析、等級(jí)分類(lèi)和主要因素分析已被采用,而神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)、子波變換和實(shí)用分析在未來(lái)可被采用. 配比通常由一個(gè)人操作,其手工設(shè)定大約50個(gè)突出的斑點(diǎn)作為“路標(biāo)”,進(jìn)行交叉配比. 之后,擴(kuò)展至整個(gè)膠. 例如:的PI和MW(分子量)的估計(jì)通過(guò)參考圖上20個(gè)或更多的已知蛋白所組成的標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)來(lái)計(jì)算未知蛋白的PI和MW. 在凝膠圖象分析系統(tǒng)依據(jù)已知蛋白質(zhì)的pI值產(chǎn)生PI網(wǎng)絡(luò),使得凝膠上其它蛋白的PI按此分配.

    所估計(jì)的度大大依賴(lài)于所建網(wǎng)格的結(jié)構(gòu)及標(biāo)本的類(lèi)型. 已知的未被修飾的大蛋白應(yīng)該作為標(biāo)志,變性的修飾的蛋白的PI估計(jì)約在±0.25個(gè)單位. 同理,已知蛋白的理論分子量可以從數(shù)據(jù)庫(kù)中計(jì)算,利用產(chǎn)生的表觀分子量的網(wǎng)格來(lái)估計(jì)蛋白的分子量. 未被修飾的小蛋白的錯(cuò)誤率大約30%,而翻譯后蛋白的出入更大. 故需聯(lián)合其他的技術(shù)完成鑒定. ELISA試劑盒

(2) 微量測(cè)序(microsequencing). 

    蛋白質(zhì)的微量測(cè)序已成為蛋白質(zhì)分析和鑒定的基石,可以提供足夠的信息. 盡管氨基酸組分分析和肽質(zhì)指紋譜(PMF)可鑒定由2-DE分離的蛋白,但zui普通的N-末端Edman降解仍然是進(jìn)行鑒定的主要技術(shù). 目前已實(shí)現(xiàn)蛋白質(zhì)微量測(cè)序的自動(dòng)化. 首先使經(jīng)凝膠分離的蛋白質(zhì)直接印跡在PVDF膜或玻璃纖維膜上,染色、切割,然后直接置于測(cè)序儀中,可用于subpicomole水平的蛋白質(zhì)的鑒定.

    但有幾點(diǎn)需注意:Edman降解很緩慢,序列以每40 min 1個(gè)氨基酸的速率產(chǎn)生;與質(zhì)譜相比,Edman降解消耗大;試劑昂貴,每個(gè)氨基酸花費(fèi)3~4$. 這都說(shuō)明泛化的Edman降解蛋白質(zhì)不適合分析成百上千的蛋白質(zhì). 然而,如果在一個(gè)凝膠上僅有幾個(gè)有意義的蛋白質(zhì),或者如果其他技術(shù)無(wú)法測(cè)定而克隆其基因是必需的,則需要進(jìn)行泛化的Edman降解測(cè)序.

    近來(lái),應(yīng)用自動(dòng)化的Edman降解可產(chǎn)生短的N-末端序列標(biāo)簽,這是將質(zhì)譜的序列標(biāo)簽概念用于Edman降解,業(yè)已成為一種強(qiáng)有力的蛋白質(zhì)鑒定. 當(dāng)對(duì)Edman的硬件進(jìn)行簡(jiǎn)單改進(jìn),以迅速產(chǎn)生N-末端序列標(biāo)簽達(dá)10~20個(gè)/d,序列檢簽將適于在較小的蛋白質(zhì)組中進(jìn)行鑒定.若聯(lián)合其他的蛋白質(zhì)屬性,如氨基酸組分分析、肽質(zhì)質(zhì)量、表現(xiàn)蛋白質(zhì)分子量、等電點(diǎn),可以更加可信地鑒定蛋白質(zhì). 選擇BLAST程序,可與數(shù)據(jù)庫(kù)相配比. 目前,采用一種Tagldent的檢索程序,還可以進(jìn)行種間比較鑒定,又提高了其在蛋白質(zhì)組研究中的作用.ELISA試劑盒

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